Burkholderia cepacia

 Bacteriemias por Burkholderia cepacia: análisis prospectivo de 33 episodios. Autores: Maialen Ibarguren Pinilla, Nazaret Cobos-Trigueros, Álex Soriano, José Antonio Martínez, Yuliya Zboromyrska, Manel Almela & José Mensa. Introducción:  El objetivo de este estudio es la descripción de las características clínicas y evolución de los episodios de bacteriemia por Burkholderia cepacia , conocer la sensibilidad antibiótica de las cepas aisladas y analizar las diferencias entre los casos procedentes de brotes epidémicos y los episodios esporádicos. Material y métodos:  Se recogieron de forma prospectiva desde 1993 a 2009 todas las bacteriemias por B. cepacia en un hospital universitario. Resultados:  Se incluyeron 33 episodios, de los cuales 21 se concentraron en dos brotes (9 en 1994 y 12 en 2006). Los casos pertenecientes a los brotes tuvieron una mediana de edad de 58 años, el 45 % tenía alguna neoplasia, la mediana de días desde el ingreso hasta la bacteriemia fue de 15 (rango 0- 1

Actividad antibiótico y antifúngica de B. cepacia provenientes de ambientes nosocomiales. Burkholderia cepacia, es un bacilo Gram negativo, no fermentador, reconocido como causal de infecciones oportunistas; además de producir compuestos con actividad antimicrobiana. En el presente estudio se evaluó el antagonismo de nueve (9) aislados nosocomiales de B. cepacia contra hongos filamentosos, levaduras y bacterias de ambientes hospitalarios. La detección antibacteriana y antifúngica, se determinó según la técnica de la doble capa y de los cortes cilíndricos en agar, respectivamente. Cuatro aislados de B. cepacia (CVCM: 626,1328, 1331 y 1332) inhibieron los diferentes géneros bacterianos analizados. B. cepacia CVCM 1332, inhibió a cinco (5) de las seis (6) especies de bacterias indicadoras, con halos de inhibición entre 11 y 22 mm; a excepción de P. fluorescens. Tres (3) aislados de B. cepacia no presentaron actividad antibacteriana. Dos aislados de B. cepacia inhibieron los hongos es

 PRUEBAS BIOQUÍMICAS Prueba de Rojo de Metilo y Voges Proskauer (MR-VP) Esta prueba se realiza para determinar la capacidad de un microorganismo de fermentar la glucosa con producción de ácido por la vía ácido mixta o con producción de un producto final neutro (acetoína) por la vía butanodiólica.  Fundamento Este medio posee pluripeptona que le da los nutrientes a las bacterias desarrollarse en el medio, asimismo la glucosa será el hidrato de carbono fermentable. La glucosa es metabolizada por dos vías y de acuerdo a ellos serán los productos finales ácidos (ácido láctico, ácido acético, y ácido fórmico) o productos neutros (acetil metil carbinol). La diferencia en el metabolismo del microorganismo pude ser reconocido por la adición de un indicado de rojo de metilo y alfa naftol e hidróxido de potasio para la obtención de los productos ácidos o neutros.  Interpretación de resultados Se examinan los tubos para revelar las pruebas bioquímicas. Prueba de rojo de metilo: se añaden unas got

  PRUEBAS BIOQUÍMICAS Prueba de Ureasa Esta prueba es utilizada para determinar la capacidad que tienen los microorganismos para hidrolizar la urea, formando así dos moléculas de amoníaco por la acción de la enzima ureasa. Fundamento La tripteína y glucosa son las encargadas de aportar los nutrientes necesarios para el desarrollo de microorganismo. El rojo de fenol es el indicador de pH del medio y el cloro de sodio se encarga de mantener el equilibrio osmótico. En esta prueba el microorganismo hidroliza la urea a través de la enzima ureasa, en la que se liberará amoníaco y dióxido de carbono. Dichos productos se encargar del cambio de coloración del medio, es decir, del amarillo al rojo.  Interpretación de resultados Se tiene que observar la coloración del medio de cultivo (ver figura 1). Microorganismos que hidrolizan la urea: medio de cultivo color rosado-rojizo. Microorganismos que no hidrolizan la urea: medio de cultivo permanece de color amarillo. Figura 1. Prueba de Ureasa. No

PRUEBAS BIOQUÍMICAS Prueba de Kligler Es un medio de cultivo cuyo objetivo es determinar si el microorganismo es capaz de fermentar los hidratos de carbono y la producción de ácido sulfhídrico.  Fundamento En medio de cultivo tiene ingredientes como la peptona de carne y la tripteína, las cuales aportan los nutrientes adecuados para el desarrollo bacteriano. Otros de ellos son la lactosa y la glucosa que son los hidratos de carbono fermentables. Asimismo, el tiosulfato de sodio es el sustrato adecuado para producir el ácido sulfhídrico, el citrato de hierro y amonio. El rojo de fenol es el indicador de pH que posee este medio, también contiene cloruro de sodio quien se encarga de mantener el balance osmótico.  Una vez establecido esto, en la fermentación de azucares se producen ácidos los cuales serán detectados por el indicador rojo de fenol, el cual vira al color amarillo en medio ácido. El tiosulfato de sodio se reducirá a sulfuro de hidrógeno el cual posteriormente reaccionará con

Agar MacConkey Este medio se utiliza para el aislamiento de bacilos Gram negativos de fácil desarrollo, aerobios y anaerobios facultativos a partir de muestras clínicas, aguas y alimentos.  En el medio de cultivo, las peptonas, aportan los nutrientes necesarios para el desarrollo bacteriano, la lactosa es el hidrato de carbono fermentable, y la mezcla de sales biliares y el cristal violeta son los agentes selectivos que inhiben el desarrollo de gran parte de la flora Gram positiva. El agar es el agente solidificante. Por fermentación de la lactosa, disminuye el pH alrededor de la colonia, lo cual produce un viraje del color del indicador de pH (rojo neutro), la absorción en las colonias, y la precipitación de las sales biliares. Los microorganismos no fermentadores de lactosa producen colonias incoloras (Laboratorios Britania, 2021). Fig 1. Contenido de Agar MacConkey. Nota. Adaptado de Laboratorios Britania. [Imagen], por BritaniaLab, 2021 de https://www.britanialab.com/back/public/u